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流式细胞分选

流式细胞分选技术是利用流式细胞分选仪，以高能量激光照射高速流动状态下被荧光色素染色的单细胞或微粒,测量其产生的散射光和发射荧光的强度,从而对细胞(或微粒)的物理、生理、生化、免yi、遗传、分子生物学性状及功能状态等进行定性或定量检测的--种现代细胞分析技术，它可根据发射光的荧光强度和波长将发光颗粒亚群分开并可实现单ke隆分选，能复杂样本中的细胞进行鉴定、分类、定量和分离,单次可同时对其中一种到四种特定细胞进行超高速分选纯化、高通量单分选或细胞芯片制备。分选后的细胞能直接用于培养、移植、核酸提取、单细胞PCR扩增或原位杂交等，可进一步进行细胞基因、蛋白、功能水平的研究和不同细胞之间的差异化研究。硬件中样本细胞丢弃的比例低于5%，保证样本中目标细胞的高回收率。一般流程：细胞接种培养-划痕-不同时间点拍照细胞迁移和侵袭实验是体外模拟细胞迁移和侵袭能力的检测方法。

选择实验外包公司需要注意哪些事项？

报价

报价单一定要有明细。规范的外包公司会根据实验方案里的各项内容进行核算报价，材料是多少、人工检测是多少，可以看到每一笔钱花在哪里，避免笼统的报价。另外注意不要一味地追求，做过实验的都知道实验成本，外包还需要考虑人工成本。如果价格过低，实验数据就难以保证可靠和来源了。当然报价也不能虚高，做好是能在有限的经费中尽量保证课题完整性。可以要求公司根据预算来调整优化方案，尽可能节约成本。(6)未消化完的软gu小块继续用II型胶原酶如_上法消化，直至软gu块基本消失。

大鼠脂肪的分离

 将手术切取的大鼠脂肪组织尽量剪碎后移至离心管，其余步骤与人脂肪的分离一致。

 经手术切除获得的大鼠皮下脂肪组织消化后原代培养24 h，且肉眼观察会发现培养瓶底部贴附着一层网状薄膜，轻轻摇晃培养瓶可使这层网状薄膜从瓶壁上脱落，镜下观 察发现大部分细胞都附着于这层膜上，通过术获取的人脂肪组织消化后则无此现象。增加胶原酶的量和消化时间也无法避免，取材时的或脂肪间结缔组织未被完全消化，穿过细胞筛进入了培养瓶并沉淀于瓶底部形成的。胶原蛋白酶虽然可以特异性水解胶原蛋白的三维螺旋结构，但不会损伤其他蛋白质。处理方法是37 ℃下用胰蛋白酶 消化5 min。然后利用40 μm的细胞筛过滤后传代。 根据作者的经验，每毫升手术切除的大鼠脂肪可分离基质血管成分细胞约1.81×106个。原代培养2.24×10^7个大鼠基质血管成分细胞，40 h后传代时约剩余 6.2×10^6个细胞，细胞剩余率27%。滴度检测：将病毒颗粒使用梯度稀释，分别293T细胞，72h后，在荧光显微镜下观察细胞荧光表达情况。

什么是脂质体？脂质体转染的原理和步骤？

细胞转染的方法主要包括：电穿孔法、显微注射、基因、磷酸钙共沉淀法、脂质体转染法、多种阳离子物质介导、病毒介导的转染等，理想的细胞转染方法是具有高转染效率、对细胞的毒性作用小等。

一、脂质体 (liome) 转染方法原理

脂质体 (liome) 转染方法原理：脂质体 ((Iiome) 作为体内和体外输送载体的工具，已经研究的十分广泛，用合成的阳离子脂类包裹 DNA，同样可以通过融合而进入细胞。使用脂质体将 DNA 带入不同类型的真核细胞，与其它方法相比，有较高的效率和较好的重复性的。CD117(c-kit)阳性细胞和二者都阳性细胞所占百分比前后比较差异无显著性(P>。

中性脂质体是利用脂质膜包裹 DNA，借助脂质膜将 DNA 导入细胞膜内。带正电的阳离子脂质体，DNA 并没有预先包埋在脂质体中，而是带负电的 DNA 自动结合到带正电的脂质体上，形成 DNA-阳离子脂质体复合物，从而吸附到带负电的细胞膜表面，经过内吞被导入细胞。(4)再次用PBS缓冲液冲洗3次，滤干，将细小的软gu块置入放有0。